Аннотация:

Актуальность: АКТГ-продуцирующие опухоли - чрезвычайно редкие новообразования поджелудочной железы. Абсолютное большинство публикаций по данной теме представлено клиническими наблюдениями: с 1946 по 2021 годы в медицинской литературе имеется всего 221 работа, в которых описывается 336 пациентов. В 75% случаях у таких больных выявляется метастатическое поражение печени. Интервенционно-радиологические подходы к купированию гормональных проявлений описаны лишь в 2 публикациях, поэтому собственное наблюдение АКТГ-эктопированного синдрома при нейроэндокринной опухоли поджелудочной железы, особенности его диагностики и лечения представляют научно-практический интерес.

Цель: представить редкое наблюдение АКТГ-эктопированного синдрома при нейроэндокринной опухоли поджелудочной железы.

Клиническое наблюдение: работа основана на данных десятилетнего динамического наблюдения за пациенткой, страдающей АКТГ-эктопированным синдромом. В 2009 году больная в возрасте 49 лет перенесла панкреатодуоденальную резекцию по поводу нейроэндокринной опухоли (НЭО) головки поджелудочной железы с синхронными метастазами в печени. В дальнейшем отмечался рост метастатических очагов, в связи с чем в декабре 2012 года и марте 2014 года были проведены два сеанса масляной трансартериальной химиоэмболизации (ТАХЭ) печени в режиме «on demand». С 2013 года у больной наблюдались отдельные клинические проявления гиперкортицизма, однако повышение уровня кортизола и АКТГ (адренокортикотропного гормона) в сыворотке крови было установлено лабораторно лишь мае 2015 года. Дексаметазоновые пробы свидетельствовали в пользу наличия эктопического источника секреции АКТГ, что является довольно редкой находкой при НЭО поджелудочной железы. При проведенной тогда же МРТ-волюмометрии объем селезенки составил всего 126 см³, т.е. был почти в 2 раза меньше, чем при исходном исследовании от 2009 года (231 см³). С учетом единичных упоминаний в литературе о ТАХЭ как о способе уменьшения проявлений гиперкортицизма, в июне 2015 года был проведен третий сеанс ТАХЭ печени. В результате вмешательства опухолевые узлы подверглись деструкции, было отмечено восстановление объема селезенки и нормализация уровней кортизола и АКТГ, сохранявшееся на протяжении 2 лет. В августе 2017 года было выявлено появление новых очагов в печени, однако гормональные проявления при этом ограничивались артериальной гипертензией. В сентябре 2017 года пациентке был проведен 4 сеанс ТАХЭ печени, осложнившийся развитием тяжелой постэмболизационной холангиопатии, потребовавшей многократного чрескожно чреспеченочного дренирования холангиогенных абсцессов печени, чрескожной чреспеченоночной холангиостомии. Рентгенохирургическое лечение осложнений увенчалось успехом, эффект ТАХЭ сохранялся более года. В 2019 году было отмечено очередное прогрессирование, однако, ввиду высокого риска ишемического повреждения желчных протоков, от ТАХЭ было решено воздержаться, больной проводилось лекарственное лечение. 04.12.2019 наступила смерть больной.

Результаты: ТАХЭ печени позволяют купировать проявления АКТГ-эктопированного синдрома, однако возможность их многократного проведения ограничена рисками развития постэмболизационной холангиопатии, возрастающими с каждым последующим сеансом вследствие редукции объема перибилиарного русла в результате предшествующих вмешательств.

Ретроспективная МРТ-волюмометрия выявила общую тенденцию к уменьшению объема селезенки с течением времени при его увеличении в сроки от 1,5 до 12,0 месяцев после каждого сеанса ТАХЭ печени (r²=0,5, p < 0,006). Объем селезенки также коррелировал с уровнем АКТГ (p < 0,0001). Хотя в экспериментах на животных было показано, что у мышей и крыс после длительного систематического воздействия дексаметазона отмечалось значительное уменьшение массы селезенки, клинических исследований, направленных на изучение аналогичной взаимосвязи, в медицинской базе PubMed нам обнаружить не удалось. Представленный случай позволяет предположить, что зависимость, сходная с описанной в лабораторных исследованиях, существует и у людей, а, следовательно, уменьшение селезенки при опухолевом поражении может быть косвенным визуализационным признаком наличия эктопической продукции АКТГ.

Выводы:

1.     Представлен редкий случай АКТГ-эктопированного синдрома при нейроэндокринной опухоли поджелудочной железы.

2.     ТАХЭ печени позволяют контролировать проявления АКТГ-эктопированного синдрома на протяжении длительного времени (от года до 2 лет).

3.     Уменьшение селезенки может быть визуализационным маркером гиперкортицизма.

Аннотация

Актуальность темы: описанные в первой части обзора преимущества эндобилиарной фотодинамической терапии (ФДТ), а именно: безопасность вмешательства, предсказуемость и воспроизводимость эффекта, отсутствие грубого рубцевания желчных протоков, возможность повторения процедур, доступность в финансово-экономическом отношении – делают эту технологию предпочтительной среди других локорегионарных воздействий у больных гилюсной холангиокарциномой.

Цель исследования: рассмотреть ФДТ с позиции клинического специалиста: осветить динамику накопления фотосенсибилизатора (ФС) опухолью in vivo, описать инструментарий для доставки света в просвет желчных протоков и техника вмешательства, рассказать об особенностях световой дозиметрии и проанализировать непосредственные и отдаленные результаты внутрипротокового фотовоздействия.

Материал и методы: проанализировано 66 отечественных и зарубежных литературных источника.

Заключение: эндобилиарная фотодинамическая терапия является безопасным и эффективным методом локорегионарного лечения больных гилюсной холангиокарциномой, который существенно увеличивает продолжительность и улучшает качество жизни ранее считавшихся инкурабельных пациентов.   

Список литературы 

1.     Akopov A.L., Rusanov A.A., Papayan G.V., Kazakov N.V. Gerasin A.V., Urtenova M.A. Endobronchial photodynamic therapy under fluorescence control: Photodynamic theranostics. Photodiagnosis Photodyn Ther. 2017 Sep; 19: 7377.

2.     Горяйнов С.А. с соавт. Интраоперационная флуоресцентная диагностика и лазерная спектроскопия при повторных операциях по поводу глиом головного мозга «Вопросы нейрохирургии» имени Н.Н. Бурденко». 2014;78(2): 22-31.

3.     Ярославцева-Исаева Е.В., Каплан М.А., Капинус В.Н., Спиченкова И.С., Сокол Н.И. Флуоресцентная диагностика злокачественных новообразований кожи с фотосенсибилизаторами хлоринового ряда Biomedical Photonics. 2018; 7(1): 13-20.

4.     Чиссов В.И., Соколов В.В., Булгакова Н.Н., Филоненко Е.В. Флуоресцентная эндоскопия, дерматоскопия, спектрофотометрия в диагностике злокачественных опухолей основных локализаций. Российский биотерапевтический журнал. 200; 5(4): 42-56.

5.     Лихванцева В.Г., Осипова Е.А., Лощенов В.Б., Кузьмин С.Г., Ворожцов Г.Н. Способ дифференциальной диагностики новообразований кожи век. Патент РФ № RU 2350262 C2. 2009.

6.     Русаков И.Г., Теплов А.А., Ульянов Р.В., Филоненко Е.В. Флуоресцентная цистоскопия у больных немышечно-инвазивным раком мочевого пузыря. Biomedical photonics. 2015; 3: 29-35.

7.     Зыков А.Е. Лазерная флюоресцентная диагностика фотодинамическая терапия заболеваний шейки матки. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук, Москва 2011: 21.

8.     Денисова Е.Д., Аполихина И.А., Булгакова Н.Н. Флуоресцентная диагностика и фотодинамическая терапия остроконечных кондилом вульвы. Акушерство и Гинекология. 2011; 8: 112-116.

9.     Silvia Affo, Le-Xing Yu, Robert F Schwabe. The Role of Cancer-Associated Fibroblasts and Fibrosis in Liver Cancer. Ann Rev Pathol. 2017 Jan 24; 12: 153-186.

10.   Namikawa T., Yatabe T., Inoue K., Shuin T., Hanazaki K. Clinical applications of 5-aminolevulinic acid-mediated fluorescence for gastric cancer. World J Gastroenterol. 2015 Aug 7; 21(29): 8769-8775.

11.   Kishi K., Fujiwara Y., Yano M., Motoori M., Sugimura K., Takahashi H., Ohue M., Sakon M. Usefulness of diagnostic laparoscopy with 5-aminolevulinic acid (ALA)-mediated photodynamic diagnosis for the detection of peritoneal micrometastasis in advanced gastric cancer after chemotherapy. Surg Today. 2016 Dec; 46 (12): 1427-1434.

12.   Ширяев А.А., Мусаев Г.Х., Лощенов М.В., Бородкин А.В., Левкин В.В., Охотникова Н.Л., Волков В.В., Макаров В.И., Лощенов В.Б. Флуоресцентная диагностика и фотодинамическая терапия в комбинированном лечении холангиоцеллюлярного рака. Biomedical Photonics. 2016; 5(4): 15-24.

13.   Goldman L. The biomedical laser: technology and clinical application. N.Y: Springer-Verlag, 1981; 342.

14.   Иванов А.В. Волоконная оптика. М.: Компания Сайрус системс, 1999; 342.

15.   Исаев С.К. Физика волоконно-оптических устройств. М.: МГУ, 1986; 219.

16.   Gower J. Optical Communication Systems: Trans. from English. M .: Radio and communication, 1989; 504.

17.   Thielen Patrick Woodtli Alain Light diffusing device for photodynamic treatment of organs United States Patent 6315775 Medlight S.A. (Ecublens, CH) 11/13/2001.

18.   Коробейников А.Г., Гатчин Ю.А., Дукельский К.В., Тер-Нерсесянц Е.В. Технологические методы снижения уровня оптических потерь в микроструктурированных волоконных световодах Научно-технический вестник информационных технологий, механики и оптики Scientific and Technical Journal of Information Technologies, Mechanics and Optics 2014;1 (89).

19.   Lee Tae Yoon , Cheon Young Koog, Shim Chan Sup. Photodynamic Therapy in Patients with Advanced Hilar Cholangiocarcinoma: Percutaneous Cholangioscopic Versus Peroral Transpapillary Approach. Photomed Laser Surg. 2016 Apr; 34(4):150-6.

20.   Францев Д.Ю., Шориков М.А., Лаптева М.Г. Методические аспекты чрескожной эндобилиарной фотодинамической терапии неоперабельных больных гилюсной холангиокарциномой Актуальные проблемы гепатопанкреатобилиарной хирургии Материалы XXIV Международного Конгресса Ассоциации гепатопанкреатобилиарных хирургов стран СНГ. Под редакцией В.А. Вишневского, С.Ф. Багненко, Ю.А. Степановой.2017; 260-261.

21.   Tang Z., Yang Y., Meng W., Li X. Best option for preoperative biliary drainage in Klatskin tumor: A systematic review and meta-analysis. Medicine (Baltimore). 2017 Oct; 96(43):e8372.

22.   Moole H., Dharmapuri S., Duvvuri A., Dharmapuri S., Boddireddy R., Moole V., Yedama P., Bondalapati N., Uppu A., Yerasi C. Endoscopic versus Percutaneous Biliary Drainage in Palliation of Advanced Malignant Hilar Obstruction: A Meta-Analysis and Systematic Review. Can. J Gastroenterol Hepatol. 2016;2016:4726078.

23.   Cheon Y.K., Kim Y.S., Cho Y.D. и соавт. Experimental interstitial photodynamic therapy of the Morris 7777 hepatoma in the rat. Korean J Med. 2004; 66: 397-403.

24.   Douillard S., Lhommeau I., Olivier D., Patrice T. In vitro evaluation of Radachlorin sensitizer for photodynamic therapy. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 2010; 98: 128-137.

25.   Matthew J. Weiss, David Cosgrove, Joseph M Herman, Neda Rastegar, Ihab Kamel, Timothy M Pawlik. Multimodal treatment strategies for advanced hilar cholangiocarcinoma. Langenbecks Arch Surg. 2014; 399: 679-692.

26.   Труфанов Г.Е., Асатурян М.А Лучевая терапия: учебник. 2010; 2: 192.

27.   Berns Mэ.W. Laser photoradiation therapy of cancer: possible role of hyperthermia. Lasers Surg. Med. 1984; 4: 87-92.

28.   Маркичев Н.А., Елисеенко В.И., Алексеев Ю.В., Армичев А.А. Фотодинамическая терапия базально-клеточного рака кожи с применением фотосенсибилизатора хлоринового ряда. Лазерная медицина. 2005; 9 (1).

29.   Ortner M.E., Caca K., Berr F., Liebetruth J., Mansmann U., Huster D., Voderholzer W., Schachschal G., Mossner J., Lochs H. Successful photodynamic therapy for nonresectable cholangiocarcinoma: a randomized prospective study. Gastroenterology. 2003 Nov; 125(5): 1355-63.

30.   Shim C.S., Cheon Y.K., Cha S.W., Bhandari S., Moon J.H., Cho Y.D., Kim Y.S., Lee L.S., Lee M.S., Kim B.S. Prospective study of the effectiveness of percutaneous transhepatic photodynamic therapy for advanced bile duct cancer and the role of intraductal ultrasonography in response assessment. Endoscopy. 2005 May; 37(5): 425-33.

31.   Zoepf T., Jakobs R., Arnold J.C., Apel D., Riemann JF. Palliation of nonresectable bile duct cancer: improved survival after photodynamic therapy. Am J Gastroenterol. 2005; 100: 2426-2430[PMID: 16279895.

32.   Witzigmann H., Berr F., Ringel U., Caca K., Uhlmann D., Schoppmeyer K., Tannapfel A., Wittekind C., Mossner J., Hauss J., Wiedmann M. Surgical and palliative management and outcome in 184 patients with hilar cholangiocarcinoma: palliative photodynamic therapy plus stenting is comparable to r1/r2 resection. Ann Surg. 2006; 244: 230-239.

33.   Блознелите Э.Л., Пономарев И.В. Эффективность фотодинамической терапии опухолей различной гистологической структуры. Российский онкологический журнал. 1997; 4:.18-21.

34.   Смирнова З. С., Кубасова И.Ю., Борисова Л.М., Халанстй А. С, Меерович Г.А., Барышников А.Ю., Коган E.А., Лукьянец Е.А., Ворожцов Г.И. Фотодинамическая терапия опухолей мозга крыс с использованием фотосенса. Российский биотерапевтический журнал. 2005; 4(3): 52-57.

35.   Wan J., Wu W., Che Y., Kang N., Zhang R. Low dose photodynamic-therapy induce immune escape of tumor cells in a HIF-1 a dependent manner through PI3K/Akt pathway. Int Immunopharmacol. 2015 Sep;28(1):44-51.

36.   Филатов В. В. Исследование эффективности различных режимов лазерного излучения на живые клетки при фотодинамическом воздействии. Электронное научно-техническое издание «Наука и образование». 2011; 10: 1-4.

37.   Klimenko V.V., Knyazev N.A., Moiseenko F.V., Rusanov A.A., Bogdanov A.A., Dubina M.V. Pulse mode of laser photodynamic treatment induced cell apoptosis. Photodiagnosis Photodyn Ther. 2016 Mar; 13: 101-107.

38.   Жорина Л.В., Змиевской Г.Н., Семчук И.П., Филатов В.В. Исследование влияния временных параметров лазерного излучения на характеристики фотодинамической терапии. Медицинская техника. 2012;6 (276): 32-36.

39.   Pe M.B., Ikeda H., Inokuchi T. Tumour destruction and proliferation kinetics following periodic, low power light, haematoporphyrin oligomers mediated photodynamic therapy in the mouse tongue. Eur J Cancer B Oral Oncol. 1994 May; 30B(3): 174-178.

40.   Willey A., Anderson R.R., Sakamoto F.H. Temperature-Modulated Photodynamic Therapy for the Treatment of Actinic Keratosis on the Extremities: A One-Year Followup Study. Dermatol Surg. 2015 Nov; 41(11):1290-1295.

41.   Борисов В.А., Загускин С.Л. Биоуправляемая фотодинамическая терапия и реабилитация онкологических пациентов. Журнал Онкохирургия. 2009; 1(2): 87.

42.   Buytaert E., Dewaele M., Agostinis P. Molecular effectors of multiple cell death pathways initiated by photodynamic therapy. Biochim Biophys Acta 1776(1): 86-107. doi:10.1016/j.bbcan. 2007.07.001.

43.   Plaetzer K., Kiesslich T., Krammer B., Hammerl P. Characterization of the cell death modes and the associated changes in cellular energy supply in response to AlPcS4-PDT. Photochem Photobiol Sci. 2002 Mar; 1(3): 172-177.

44.   Cavin S., Wang X., Zellweger M., Gonzalez M., Bensimon M., Wagnrnres G., Krueger T., Ris H.B., Gronchi F., Perentes J.Y. Interstitial fluid pressure: A novel biomarker to monitor photo-induced drug uptake in tumor and normal tissues. Lasers Surg Med. 2017 Oct; 49(8): 773-780.

45.   Perentes J.Y., Wang Y., Wang X., Abdelnour E., Gonzalez M., Decosterd L., Wagnieres G., van den Bergh H., Peters

Аннотация

Цель: оценить возможности МРТ с контрастным усилением (КУ) в определении различной

степени дифференцировки метастатических нейроэндокринных опухолей (НЭО) в печени.

Материалы и методы: в исследование включено 103 пациента с морфологически верифицированными метастатическими НЭО печени. Всем пациентам была выполнена МРТ брюшной полости с КУ. В общей сложности был оценен 241 очаг. В области интереса (region of interest, ROI), которая соответствовала округлому участку в солидной части метастазов, были измерены количественные показатели интенсивности сигнала (ИС) на нативных и постконтрастных Т1-взвешенных изображениях (ВИ). Полученные данные сравнивались в группах пациентов с различной степенью дифференцировки опухолевой ткани, также оценивалась корреляция МРТ-характеристик со значением Ki67.

Результаты: результаты исследования показали, что для метастазов со степенью дифференцировки Grade (G) 1 характерно более выраженное накопление МР-контрастного средства (МРКС) и более высокая ИС в артериальную (p = 0,0002, p = 0,0003, соответственно) и венозную (p = 0,0003, p = 0,0001, соответственно) фазы КУ по сравнению с группами G2 и G3. Также для НЭО с низкой степенью злокачественности была характерна более высокая ИС в отсроченную фазу контрастного усиления (p = 0,0038) и более быстрое вымывание МРКС (p = 0,0314). Выявлена обратная корреляция индекса Ki67 со степенью накопления МРКС очагами в артериальную и венозную фазы КУ.

Выводы: в проведенной работе показано, что по мере снижения дифференцировки печеночных метастазов НЭО уменьшается степень накопления МРКС ими в артериальную и венозную фазы при МРТ с КУ. Установленная закономерность может быть использована для определения наиболее информативных участков для биопсии и выявления феномена «миграции» степени дифференцировки, что позволит грамотно и своевременно выбрать/изменить тактику лечения.

Список литературы 

1.     Yao J.C., Hassan M., Phan A. et. al. One hundred years after ‘carcinoid’: Epidemiology of and prognostic factors for neuroendocrine tumors in 35,825 cases in the United States. J. Clin. Oncol. 2008; 26(18): 3063-3072.

2.     Basuroy R., Srirajaskanthan R., Ramage J.K. A multimodal approach to the management of neuroendocrine tumour liver metastases. Int. J. Hepatol. 2012; 81(9): 80-93.

3.     Орел Н.Ф., Горбунова В. А., Делекторская В. В. и др. Практические рекомендации по лекарственному лечению нейроэндокринных опухолей желудочнокишечного тракта и поджелудочной железы. Практические рекомендации RUSSCO. 2018; 12(1): 430-456.

4.     Bosman FT., Carneiro F, Hruban R.H. WHO Classification of Tumours of the Digestive System 4th ed. Lyon. IARC.2010.

5.     Rindi G., Falconi M., Klersy C. et. al. TNM staging of neoplasms of the endocrine pancreas: results from a large international cohort study. J Natl Cancer Inst. 2012; 104 (4): 764-777.

6.     Lloyd R.V., Osamura R.Y, Kloppel G. WHO Classification of Tumours of Endocrine Organs 4th ed. Lyon. IARC, 2017.

7.     Basturk O., Tang L., Hruban R.H. et. al. Poorly differentiated neuroendocrine carcinomas of the pancreas: a clinicopathologic analysis of 44 cases. Am J Surg Pathol. 2014; (6): 437-447.

8.     Tang L.H., Basturk O., Sue J.J. A Practical Approach to the Classification of WHO Grade 3 (G3) Well-differentiated Neuroendocrine Tumor (WD-NET) and Poorly Differentiated Neuroendocrine Carcinoma (PD-NEC) of the Pancreas. Am J Surg Pathol. 2016; 40: 1192-1202.

9.     Iwazawa J., Onue S. Transarterial chemoembolization with miriplatinlipiodol emulsion for neuroendocrine metastases of the liver. World J. Radiol. 2010; 12: 468-471.

10.   Basturk O., Yang Z., Tang L.H. et. al. The high-grade (WHO G3) pancreatic neuroendocrine tumor category is morphologically and biologically heterogenous and includes both well differentiated and poorly differentiated neoplasms. Am J Surg Pathol. 2015; 39: 683-690.

11.   Khan M.S., Luong T.V., Watkins J. et. al. A comparison of Ki-67 and mitotic count as prognostic markers for metastatic pancreatic and midgut neuroendocrine neoplasms. Br J Cancer. 2013; 108: 1838-45.

12.   Ueda Y, Toyama H., Fukumoto T. et. al. Prognosis of Patients with Neuroendocrine Neoplasms of the Pancreas According to the World Health Organization 2017 Classification. J. pancreas. 2017; 12: 216-220.

13.   Pavel R.M., Baudin E., Couvelard A et. al. ENETS Consensus Guidelines for the management of patients with liver and other distant metastases from neuroendocrine neoplasms of foregut, midgut, hindgut, and unknown primary. Neuroendocrinology. 2012; 95 (2): 157-176.

14.   Cuneo K.C., Chenevert T.L., Ben-Josef E. et. al. A pilot study of diffusion-weighted MRI in patients undergoing neoadjuvant chemoradiation for pancreatic cancer. Transl. Oncol. 2014; 7 (5): 644-649.

15.   Oberg K. Neuroendocrine tumors of the digestive tract: impact of new classifications and new agents on therapeutic approaches. Curr Opin Oncol. 2012; 24 (4): 433-440.

16.   Kulke M.H., Shah M.H., Benson A.B. Neuroendocrine tumors, version 1.2015. J Natl Compr Canc Netw. 2015; 13 (1): 78-108.

17.   Белоусова Е. Л. (Амосова Е. Л.), Кармазановский Г. Г., Кубышкин В. А. и др. КТ-признаки, позволяющие определить оптимальную тактику лечения при нейроэндокринных опухолях поджелудочной железы. Медицинская визуализация. 2015; 5: 73-82.

18.   Besa C., Ward S., Cui Y et. al. Neuroendocrine Liver Metastases: Value of Apparent Diffusion Coefficient and Enhancement Ratios for Characterization of Histopathologic Grade. J Magn Reson Imaging. 2016; 44 (6): 14321441.

19.   Guo C.G., Ren S., Chen X. et. al. Pancreatic neuroendocrine tumor: prediction of the tumor grade using magnetic resonance imaging findings and texture analysis with 3-T magnetic resonance. Cancer Manag Res. 2019; 11: 1933-1944.

20.   Hussain S.M., Liver MRI. Correlation with other imaging modalities and histopathology. 2007.

Аннотация

Актуальность темы: гилюсная холангиокарцинома (опухоль Клацкина) - редкое и тяжело протекающее злокачественное новообразование проксимальных внепеченочных желчных протоков, с неблагоприятным прогнозом, отличающееся медленным перидуктальным инфильтративным ростом и поздним метастазированием, приводящее к смерти больного чаще всего из-за локальных осложнений. Основным методом лечения этого заболевания считается хирургический, однако большинство (до 70-80%) пациентов к моменту установления диагноза являются неоперабельными в силу местной распространенности заболевания. Кроме того, частота локальных рецидивов даже после радикальных операций достигает 80% в течение 7 лет В этой связи для воздействия на эту опухоль был предложен ряд локорегионарных технологий, одной из которых является эндобилиарная фотодинамическая терапия (ФДТ).

Цель исследования: привести преклиническое обоснование целесообразности применения ФДТ у больных опухолью Клацкина: описать физико-химические и биологические механизмы действия метода и обобщить данные экспериментальных исследований, что подготовит читателя к восприятию второй части обзора, основанной на анализе результатов клинических работ и имеющей более практическую направленность.

Материал и методы: проанализировано 63 отечественных и зарубежных литературных источника.

Заключение: внутрипротоковая фотодинамическая терапия продемонстрировала свою безопасность и эффективность во многих экспериментальных исследованиях и может с успехом применяться в клинической практике.

Список литературы

1.     Узденский А.Б. Клеточно-молекулярные механизмы фотодинамической терапии 2010, Санкт-Петербург «Наука» стр.3-4, 13-14, 327с.

2.     Цыб А.Ф. с соавт., Фотодинамическая терапия, «Медицинское информационное агентство» 192 с., 2009, Москва.

3.     Решетников А.В. Фотосенсибилизаторы в современной клинической практике (обзор). Материалы научно-практической конференции оториноларингологов ЦФО РФ «Лазерные технологии в оториноларингологии» под ред. В.Г. Зенгера и А.Н. Наседкина, Тула 26-28 сентября, 2007г.

4.     Davies M.J. Singlet oxygen-mediated damage to proteins and its consequences. Biochem Biophys Res Commun. 2003 Jun 6; 305(3): 761-770.

5.     Girotti A.W. Photodynamic lipid peroxidation in biological systems. Photochem Photobiol. 1990 Apr; 51(4): 497509.

6.     Hsieh YJ., Wu C.C., Chang C.J., Yu J.S. Subcellular localization of Photofrin determines the death phenotype of human epidermoid carcinoma A431 cells triggered by photodynamic therapy: when plasma membranes are the main targets. J Cell Physiol. 2003 Mar;194(3): 363-375.

7.     Berg K., Moan J. Lysosomes as photochemical targets. Int J Cancer. 1994 Dec 15; 59 (6): 814-822.

8.     Berg K., Moan J. Lysosomes and microtubules as targets for photochemotherapy of cancer. Photochem Photobiol. 1997 Mar; 65(3): 403-409.

9.     Chernyak B.V., Izyumov D.S., Lyamzaev K.G., et al. Production of reactive oxygen species in mitochondria of HeLa cells under oxidative stress. Biochim Biophys Acta. 2006 May- Jun;1757 (5-6): 525-534. Epub 2006 Apr 7.

10.   Zhang L.J., O'Shea D., Zhang C.Y, et al. Evaluation of a bacteriochlorin-based photosensitizer's anti-tumor effect in vitro and in vivo. J Cancer Res Clin Oncol. 2015 Nov; 141(11): 1921-1930.

11.   Zhang L.J., Yan YJ., Liao P.Y, et al. Synthesis and antitumor activity evaluation of a novel porphyrin derivative for photodynamic therapy in vitro and in vivo. Tumour Biol. 2016 May; 37(5): 6923-6933.

12.   Shi R., Li C., Jiang Z, et al. Preclinical Study of Antineoplastic Sinoporphyrin Sodium-PDT via In Vitro and In Vivo Models. Molecules. 2017 Jan 11; 22(1). PII: E112.

13.   Korbelik M., Krosl G., Olive P.L., Chaplin D.J. Distribution of Photofrin between tumour cells and tumour associated macrophages. Br. J. Cancer (I991), 64, 508512.

14.   Korbelik M., Krosl G. Photofrin accumulation in malignant and host cell populations of various tumours. British Journal of Cancer (1996) 73, 506-513.

15.   Sharma S., Jajoo A., Dube A. 5-Aminolevulinic acid-induced protoporphyrin-IX accumulation and associated phototoxicity in macrophages and oral cancer cell lines. J Photochem Photobiol B. 2007 Sep 25; 88(2-3): 156-162. Epub 2007 Aug 2.

16.   Agostinis P., Berg K., Cengel K.A., et al. Photodynamic therapy of cancer: an update. CA Cancer J Clin. 2011 Jul-Aug;61(4): 250-281. doi: 10.3322/caac.20114. Epub 2011 May 26.

17.   Moan J., Peng Q., Sorensen R., et al. The biophysical foundations of photodynamic therapy. Endoscopy. 1998 May; 30 (4): 387-391.

18.   Profio A.E., Doiron D.R. Transport of light in tissue in photodynamic therapy. Photochem Photobiol 1987; 46: 591-599.

19.   Shackley D.C., Whitehurst C., Moore J.V., et al. Light penetration in bladder tissue: implication for the intravescical photodynamic therapy of bladder tumours. BJU Int 2000 l86: 638-643.

20.   Melo C.A., Lima A.L., Brasil I.R., et al. Characterization of light penetration in rat tissues. J Clin Laser Med Surg. 2001 Aug; 19 (4): 175-179.

21.   Silvia Affo, Le-Xing Yu., Robert F. Schwabe. The Role of Cancer-Associated Fibroblasts and Fibrosis in Liver Cancer. Annu Rev Pathol. 2017 Jan 24; 12: 153-186.

22.   Parsa P., Jacques S.L., Nishioka N.S. Optical properties of rat liver between 350 and 2200 nm. Appl Opt. 1989 Jun 15; 28(12): 2325-30.

23.   Brancaleon L., Moseley H. Laser and non-laser light sources for photodynamic therapy. Lasers Med Sci. 2002; 17: 173-186.

24.   Странадко Е.Ф., Армичев А.В., Гейниц А.В. Источники света для фотодинамической терапии. Лазерная медицина. - 2011. - Т. 15, вып. 3: 63-69.

25.   Heiskanen V., Hamblin M.R. Photobiomodulation: lasers vs. light emitting diodes? Photochem Photobiol Sci. 2018 Aug 8; 17(8): 1003-1017.

26.   Lima A.C. et al, Low-Level Laser and Light-Emitting Diode Therapy for Pain Control in Hyperglycemic and Normoglycemic Patients Who Underwent Coronary Bypass Surgery with Internal Mammary Artery Grafts: A Randomized, Double-Blind Study with Follow-Up, Photomed. Laser Surg., 2016, 34(6), 244-251. doi: 10.1089/pho.2015. 4049.

27.   Lima A.C. et al. Photobiomodulation (Laser and LED) on Sternotomy Healing in Hyperglycemic and Normoglycemic Patients Who Underwent Coronary Bypass Surgery with Internal Mammary Artery Grafts: A Randomized, Double-Blind Study with Follow-Up, Photomed. Laser Surg., 2017, 35(1), 24-31. doi: 10.1089/pho.2016.4143.

28.   Ammar T.A. Monochromatic Infrared Photo Energy versus Low Level Laser Therapy in Patients with Knee Osteoarthritis, J. Lasers Med. Sci., 2014, 5(4), 176-182.

29.   Freitas A.C. et al. Chemotherapy-induced oral mucositis: effect of LED and laser phototherapy treatment protocols, Photomed. Laser Surg., 2014, 32(2), 81-87.

30.   Reeds K.B., Ridgway T.D., Higbee R.G., Lucroy M.D. Non-coherent light for photodynamic therapy of superficial tumours in animals. Vet Comp Oncol. 2004 Sep;2(3):157-63. doi: 10.1111/j. 1476-5810.2004.00052.x

31.   Henderson B.W., Dougherty T.J. How does photodynamic therapy work? Photochem. Photobiol. 1992; 55 (1): 145-157.

32.   Dougherty T.J., Gomer C.J., Henderson B.W., et al. Photodynamic therapy. J. Natl. Cancer Inst. 1998; 90(12): 889-905.

33.   Dougherty T.J. An update on photodynamic therapy applications. J Clin Laser Med Surg. 2002 Feb; 20(1): 3-7.

34.   Chen B., Pogue B.W., Goodwin I.A. Blood flow dynamics after photodynamic therapy with verteporfin in the RIF-1 tumor. Radiat. Res.- 2003.- №160.- Р452-459.

35.   Gollnick S.O., Owczarczak B., Maier P. Photodynamic therapy and anti-tumor immunity. Lasers Surg Med. 2006 Jun; 38(5): 509-515.

36.   Gollnick S.O., Brackett C.M. Enhancement of antitumor immunity by photodynamic therapy. Immunol Res. 2010 Mar; 46(1-3): 216-226.

37.   Pizova K., Tomankova K., Daskova A., et al. Photodynamic therapy for enhancing antitumour immunity. Biomed Pap Med Fac Univ Palacky Olomouc Czech Repub. 2012 Jun; 156(2): 93-102.

38.   Siddiqui S.H., Awan K.H., Javed F. Bactericidal efficacy of photodynamic therapy against Enterococcus faecalis in infected root canals: a systematic literature review. Photodiagnosis Photodyn Ther. 2013 Dec; 10(4): 632-643.

39.   Diniz I.M., Teixeira K.I., Araujo P.V., et al. Evaluation of antibacterial photodynamic therapy effects on human dental pulp cell cultures. Photodiagnosis Photodyn Ther. 2014 Sep; 11(3): 300-306.

40.   Javed F., Samaranayake L.P., Romanos G.E. Treatment of oral fungal infections using antimicrobial photodynamic therapy: a systematic review of currently available evidence. Photochem Photobiol Sci. 2014 May; 13(5): 726-734.

41.   Fumes A.C., da Silva Telles P.D., Corona S.A.M., Borsatto M.C. Effect of aPDT on Streptococcus mutans and Candida albicans present in the dental biofilm: Systematic review. Photodiagnosis Photodyn Ther. 2018 Mar; 21: 363366.

42.   Гинтовт О.И. Применение внутрипротокового фотооблучения в комплексном лечении больных холангитом доброкачественной этиологии: Автореф. дис. канд. мед. Наук. О. И. Гинтовт.- Санкт-Петербург, 2008.- С. 18.

43.   Пантелеев В.С. Фотодинамическое воздействие в сочетании с лазероантибиотикотерапией у больных с гнойно-септическими осложнениями. Автореф. дис. докт. мед. Наук. В.С. Пантелеев. - Уфа, 2012. - С.24-35.

44.   Васильев Н.Е., Огиренко А.П. Антимикробная фотодинамическая терапия. Лазерная медицина. - 2002. - Т.6. - №1. - С. 32-38.

45.   Ефимова Е.Г., Чейда A.A., Гарасько Е.В., и др. Антимикробные эффекты фотодинамической терапии. Рос. биотер. журн. 2007. № 1. С. 15.

46.   Дешук А.Н. Фотодинамическая терапия экспериментального острого холецистита. А.Н. Дешук, П.В. Гарелик/Новости хирургии.- 2012.- Т. 20, № 5.- С. 3-10.

47.   Kiesslich T., Berlanda J., Plaetzer K., et al. Comparative characterization of the efficiency and cellular pharmacokinetics of Foscan- and Foslip-based photodynamic treatment in human biliary tract cancer cell lines. Photochem Photobiol Sci. 2007 Jun;6 (6): 619-627.

48.   Cao L.Q., Xue P., Lu H.W., et al. Hematoporphyrin derivative-mediated photodynamic therapy inhibits tumor growth in human cholangiocarcinoma in vitro and in vivo. Hepatol Res. 2009 Dec; 39(12): 1190-1197.

49.   Wang J.B., Liu L.X., Pan S.H., et al. Therapeutic effect of photodynamic therapy using hematoporphyrin monomethyl ether (HMME) on human cholangiocarcinoma cell line QBC939. Neoplasma. 2010; 57(1): 79-85.

50.   Kim C.H., Chung C.W., Choi K.H., et al. Effect of 5-aminolevulinic acid-based photodynamic therapy via reactive oxygen species in human cholangiocarcinoma cells. Int J Nanomedicine. 2011; 6: 1357-1363.

51.   Chung C.W., Kim C.H., Lee H.M., et al. Aminolevulinic acid derivatives-based photodynamic therapy in human intra- and extrahepatic cholangiocarcinoma cells. Eur J Pharm Biopharm. 2013 Nov; 85(3 Pt A): 503-510.52.

52.   Chen Y.J., Jiang H.T., Cao J.Y. Influence of Photodynamic Therapy on Apoptosis and Invasion of Human Cholangiocarcinoma QBC939 Cell Line. Chin Med Sci J. 2015 Dec; 30(4): 252-259.

53.   Sirica A.E., Zhang Z., Lai G.H., et al. A novel «patientlike» model of cholangiocarcinoma progression based on bile duct inoculationof tumorigenic rat cholangiocyte cell lines. Hepatology. 2008 Apr;47(4):1178-1190.

54.   Wong K., Song L.M., Wang K.K., Zinsmeist A.R. Mono-L-aspartyl chlorin e6 (NPe6) and hematoporphyrin derivative (HpD) in photodynamic therapy administered to a human cholangiocarcinoma model. Cancer. 1998; 82: 421-427.

55.   Cadamuro M., Brivio S., Stecca T., et al. Animal models of cholangiocarcinoma: What they teach us about the human disease. Clin Res Hepatol Gastroenterol. 2018 Oct; 42(5): 403-415.

56.   Loeuillard E., Fischbach S.R., Gores G.J., Rizvi S. Animal models of cholangiocarcinoma. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 2018 Apr 5. PII: S0925-4439(18) 30124-8.

57.   Tzerkovsky D.A. Multiple-field interstitial photodynamic therapy of subcutaneously transplanted cholangiocellular carcinoma RS-1 in rats. Exp Oncol. 2017 Jul; 39(2):117-120.

58.   van Hillegersberg R., Marijnissen J.P., Kort W.J., et al. Interstitial photodynamic therapy in a rat liver metastasis model. Br J Cancer 1992; 66: 1005-14.

59.   Rovers J.P., Saarnak A.E., Molina A., et al. Effective treatment of liver metastases with photodynamic therapy, using the second-generation photosensitizer meta-tetra (hydroxyphenyl) chlorine (mTHPC), in a rat model. Br J Cancer 1999; 81: 600-608.

60.   Douillard S., Olivier D., Patrice T. In vitro and in vivo evaluation of Radachlorin(R) sensitizer for photodynamic therapy. Photochem Photobiol Sci. 2009 Mar; 8(3): 405413.

61.   Wang X., Li J., Li L., Li X. Photodynamic Therapy-Induced Apoptosis of Keloid Fibroblasts is Mediated by Radical Oxygen Species In Vitro. Clin Lab. 2015; 61(9): 1257-1266.

62.   Zhang C., Wang J., Chou A., et al. Photodynamic therapy induces antifibrotic alterations in primary human vocal fold fibroblasts. Laryngoscope. 2018 Sep; 128(9): E323-E331.

63.   Mendoza-Garcia J., Sebastian A., Alonso-Rasgado T., Bayat A. Ex vivo evaluation of the effect of photodynamic therapy on skin scars and striae distensae. Photodermatol photoimmunol photomed. 2015; 31: 239–251.